限制性內(nèi)切酶: 使用前需要考慮的五件事 自20世紀70年代以來，使用限制酶來表征DNA的方法一直很受歡迎。如今，這種技術仍然是評估DNA序列簡單、快速的方法之一。與大多數(shù)實驗室試劑一樣，限制性內(nèi)切酶可能是變化無常的。無論你是簡單地消化一個質粒，還是執(zhí)行復雜的克隆或篩選程序，都需要考慮幾個主要的因素:
正確的使用條件
每一種酶都是不同的，需要特定的條件，例如:
BSA是許多限制性酶的穩(wěn)定劑；有些酶不能長時間工作超過1-2個小時
大多數(shù)限制性酶在pH 7.2和pH 8.5之間有效地消化，使用合適的緩沖液很重要。
大多數(shù)商業(yè)供應商都有他們自己選擇和使用限制性內(nèi)切酶的特別指南，使用前應了解清楚。
在雙重限制性酶消化時，如果兩種酶的佳條件不同，你可能需要部分地犧牲一種酶的活性。在分析結果時要考慮這一點。或者，可以進行連續(xù)的消化，先使用種酶，凝膠提取去除緩沖液組分，然后用第二種酶消化。如果使用這種方法，開始用多個管子進行相同反應可能是明智的，因為在凝膠提取過程中，可能會丟失很多材料。
甲基化作用
當細菌復制一個質粒時，它們通常將特定的CpG島甲基化。這些序列通常是甲基化的目標。 限制性酶切位點也可能由于與甲基化位點有重疊而無法切割。此時，限制性內(nèi)切酶位點與旁側的序列恰巧組成Dam或者Dcm識別位點，并進而被甲基化而阻斷切割。因此在質粒構建設計酶切位點時，要充分考慮到這種情況。
在實驗室大腸桿菌菌株中有三種不同類型的甲基化酶: Dam甲基化酶、Dcm甲基轉移酶和EcoKI甲基化酶。如果你想要消化一個可能被甲基化的限制位點，你可以使用一個甲基化無能力的大腸桿菌菌株(JM11)來繁殖你的質粒。這些大腸桿菌菌株無法甲基化DNA，從而你的限制性酶可以裂解CpG島。
星活性小化
一些限制酶在特定的條件下，它們可能會變得雜亂，隨機消化DNA，而不是在特定的識別位點。這種現(xiàn)象被稱為星活性，通常是由長時間的潛伏期或緩沖條件不佳(如pH)引起的。因此，使用所需的酶與推薦的緩沖液是至關重要的。
此外，高甘油濃度可能會導致星活性增加。由于大多數(shù)酶和它們的緩沖液都被包裝成甘油來延長保質期，所以你應該充分稀釋緩沖液和酶。這也是為什么許多公司在他們的通用步驟建議20 - 50?l反應體系和提供10 x緩沖液。
給你的酶一些空間
某些酶在識別位點兩邊有幾個堿基對時效率高。如果你要用雙切，兩種酶位置比較緊密，或者消化PCR產(chǎn)物的末端時，這一點尤其重要。
每個制造商對他們的產(chǎn)品都有具體的建議，但通常建議確保在識別位點的兩邊至少有6個堿基對。添加更多堿基對的簡單方法是通過PCR引物進行設計。盡量避免帶有引物二聚體形成風險的序列。
同裂酶和異裂酶
有時你需要使用一種特殊的酶，它的條件并不適合你的實驗設置。在這種情況下，同裂酶可能會幫助你進行你的實驗，而不會嚴重影響你的終結果。
同裂酶是兩種能識別相同的位點，但具有不同性質的限制性酶，通常來自不同的細菌體系。例如，SinI 和AvaII 都都識別序列G / G(A或T)CC。然而，AvaII是甲基化敏感的，而SinI不是。因此，如果你想要切斷這個序列，并且不想使用甲基化不敏感的大腸桿菌菌株，那么SinI可以滿足條件，而AvaII則不會。
兩種酶具有相同的識別位點，但在不同的堿基對上切割被稱為異裂酶。這可能有助于避免星活性和甲基化敏感性。例如， KpnI和Acc65I都識別這個位點:GGTACC，但在不同的位置切割。KpnI切割bp 5:GGTAC / C，而Acc65I切割bp 1:G / GTACC。KpnI可能會顯示出星活性，而Acc65I則更強健。因此，如果切割位置不重要，Acc65I可能是一個更好的選擇。
